Tal y
como vimos en el post anterior, la toma de datos biométricos en anfibios
requiere de mucha paciencia (en el caso de los renacuajos), sin embargo en los juveniles/metamórficos
y adultos la paciencia y concentración siguen permanentes, ya que hay que
considerar que la colecta de los ejemplares requiere un conocimiento teórico
sobre la historia natural, patrón de actividad, además de saber identificar las
especies mediante su vocalización (realizada por los machos) y tener la
suficiente rapidez y técnica para capturarlos sin ocasionarles alguna lesión.
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| Rana Platanera / Boana xerophylla (Duméril & Bibron, 1841). |
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| Metamorfico de Rana Platanera / Boana xerophyla (Duméril & Bibron, 1841). |
Un punto
fundamental que debemos recordar es la morfología externa de un anfibio-anuro
en estado juvenil o adulto, veamos la siguiente fotografía…
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| Morfología de un Sapito Niñera / Mannophryne herminae (Boettger, 1893). |
Ahora
bien, quiero resaltar que los datos a tomar en campo son los siguientes: localidad
especifica, estado, municipio, coordenadas geográficas (si usted cuenta con
GPS), altitud, hora, fecha, cantidad de individuos, descripción del hábitat-micro
hábitat y demás información que usted considere necesaria, recuerde que existen
formatos prediseñados para la toma de datos en campo, incluso usted pude
diseñar su propio formato, en lo personal, ordeno los datos de manera sistemática
en función a las colectas/avistamientos.
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| Medicción del ancho de la boca en Sapo común / Rhinella marinna Linnaeus, 1758. |
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| Toma de medidas biométricas a un Sapito Niñera / Mannophryne herminae (Boettger, 1893). |
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| La toma de datos biométricos se realiza con un vernier. |
- Conocer y aplicar el protocolo de bioseguridad y manejo de anfibios (click aquí).
- Medir la masa corporal del ejemplar mediante una balanza o peso previamente calibrado, así como también conocer el peso de la bolsa/saco donde será colocado el ejemplar antes de ser pesado y posteriormente restar ese valor al peso total obtenido.
- Cada individuo debe ser colocado en una bolsa plástica individual, humedecida con algunas gotas de agua del medio ambiente, con su respectiva etiqueta de identificación.
- Se debe ser cuidadoso al realizar las medidas con el vernier para evitar cortar o lastimar el ejemplar, recuerde que el vernier debe ser desinfectado cada vez que tome las medidas de un individuo diferente.
- Los guantes de latex o bolsas plásticas deben ser reemplazados por cada ejemplar, en su defecto debe desinfectarse las manos desnudas cada vez que manipule un anfibio durante la investigación.
- Una vez que obtuvo los datos de un ejemplar se procede a liberarlo lo más cercano al área donde fue colectado, de ser necesario es fotografiado para la base de datos.
Ya
para finalizar, recuerde que el trabajo campo es la primera fuente de
información sobre la biología y ecología de una especie en particular o
comunidad de estudio, en ello podemos obtener datos relacionados con el hábitat,
rasgos fisiológicos, etológicos, alimentación,
reproducción, etc.
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| Sapo común / Rhinella marina Linnaeus, 1758. |
Referencias.
Aguirre-León,
J. 2011.Metodos de estimación, captura y contención de anfibios y reptiles. pp.
61-88 En: Gallina, S. & C. López-González (editor). 2011. Manual de
técnicas para el estudio de la fauna. Volumen I Universidad Autónoma de
Querétaro-Instituto de Ecología, A. C. Querétaro, México 377 pp.
Cortés,
A., Ramírez, C. y Urbina, N. 2015. Protocolo para la medición de los rasgos
funcionales en anfibios. pp 128-179. En: Salgado-Negret, B. (ed). La ecología
funcional como aproximación al estudio, manejo y conservación de la
biodiversidad: protocolos y aplicaciones. Instituto de Investigación de
Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. Bogotá, D. C. Colombia. 236 pp.
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